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當(dāng)前位置:首頁(yè)技術(shù)文章豬瘟病毒(CSFV)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光 PCR 法)

豬瘟病毒(CSFV)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光 PCR 法)

更新時(shí)間:2022-04-20點(diǎn)擊次數(shù):2605

【產(chǎn)品名稱】

商品名稱:豬瘟病毒(CSFV)核酸檢測(cè)試劑盒(熒光 PCR 法)

Name :Classical Swine Fever Virus Detection Kit (Real-Time PCR Method)

【包裝規(guī)格】50T/盒

【預(yù)期用途】 豬瘟是由豬瘟病毒(Classical swine fever virus, CSFV)引起豬的以稽留高熱、皮膚和黏膜出現(xiàn)大量出血點(diǎn)為 主要特征的一種高度接觸性、致死性的傳染病[1],主要通過(guò)呼吸道和消化道傳染,傳播速度快, 發(fā)病率和病死 率高,給養(yǎng)豬業(yè)帶來(lái)了巨大的經(jīng)濟(jì)損失[2],被世界動(dòng)物衛(wèi)生組織(OIE)列為必須報(bào)告的動(dòng)物傳染病,被我 國(guó)農(nóng)業(yè)部列為一類動(dòng)物疫病,是危害我國(guó)養(yǎng)豬業(yè)最嚴(yán)重的動(dòng)物疫病之一。 本試劑盒適用于檢測(cè)的扁桃體、淋巴結(jié)等組織病變部與健康部交界處組織、全血等標(biāo)本中豬瘟病毒 RNA, 適用于豬瘟病毒感染的輔助診斷。

【檢驗(yàn)原理】 本試劑盒用一對(duì)豬瘟病毒特異性引物,結(jié)合一條特異性熒光探針,用一步法熒光 RT-PCR 技術(shù)對(duì)豬瘟病毒 RNA 進(jìn)行體外擴(kuò)增檢測(cè),用于臨床上對(duì)可疑感染者的病原學(xué)診斷。

【試劑組成】 包裝規(guī)格 50T/盒 CSFV 反應(yīng)液 500μL×2 管 酶液 50μL×1 管 CSFV 陽(yáng)性質(zhì)控品 50μL ×1 管 陰性質(zhì)控品 250μL ×1 管 說(shuō)明:不同批號(hào)的試劑盒組分不可交互使用。

【儲(chǔ)存條件及有效期】 -20℃±5℃,避光保存、運(yùn)輸、反復(fù)凍融次數(shù)不超過(guò) 5 次,有效期 12 個(gè)月。 【適用儀器】 ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測(cè)儀。

【標(biāo)本采集】 病死或撲殺的豬,取扁桃體、淋巴結(jié)等組織病變部與健康部交界處組織;待檢活豬,用注射器取血 5mL。

【保存和運(yùn)輸】 上述標(biāo)本短期內(nèi)可保存于-20℃,長(zhǎng)期保存可置-70℃,但不能超過(guò) 6 個(gè)月,標(biāo)本運(yùn)送應(yīng)采用 2~8℃冰袋運(yùn)輸, 嚴(yán)禁反復(fù)凍融。

【使用方法】 

1. 樣品處理(樣本處理區(qū))

1.1 樣本前處理 每份組織分別從 3 個(gè)不同的位置稱取樣品約 1g,手術(shù)剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生 理鹽水后繼續(xù)研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離 心管中;全血樣品待血凝后取血清 100μL,置 1.5mL 離心管中。

1.1 核酸提取 推薦采用優(yōu)利科(上海)生命科學(xué)有限公司生產(chǎn)的核酸提取或純化試劑(磁珠法或離心柱法)進(jìn)行核酸提取,請(qǐng)按照 試劑說(shuō)明書進(jìn)行操作。

2. 試劑配制(試劑準(zhǔn)備區(qū)) 根據(jù)待檢測(cè)樣本總數(shù),設(shè)所需要的 PCR 反應(yīng)管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對(duì)照+1 管陽(yáng)性對(duì)照;反應(yīng)管 數(shù)每滿 10 份,多配制 1 份),每測(cè)試反應(yīng)體系配制如下表: 試劑 CSFV 反應(yīng)液 酶液 用量 20μL 1μL 將混合好的測(cè)試反應(yīng)液分裝到 PCR 反應(yīng)管中,21μL/管。

3. 加樣(樣本處理區(qū)) 將步驟 1 提取的核酸、陽(yáng)性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 4μL,分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中,蓋好管蓋,混勻,短 暫離心。

4. PCR 擴(kuò)增(核酸擴(kuò)增區(qū)) 4.1 將待檢測(cè)反應(yīng)管置于熒光定量 PCR 儀反應(yīng)槽內(nèi); 4.2 設(shè)置好通道、樣品信息,反應(yīng)體系設(shè)置為 25μL;熒光通道選擇:檢測(cè)通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)NONE,ABI 系列儀器請(qǐng)勿選擇 ROX 參比熒光, 選擇 None 即可。 4.3 推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置: 步驟 循環(huán)數(shù) 溫度 時(shí)間 收集熒光信號(hào) 1 1 cycle 42℃ 20min 否 2 1 cycle 95℃ 10min 否 3 40 cycles 94℃ 15sec 否 55℃ 30sec 是

5. 結(jié)果分析判定 5.1 結(jié)果分析條件設(shè)定 設(shè)置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機(jī)器自動(dòng)分析的結(jié)果分析,當(dāng)曲線出現(xiàn)整體傾斜時(shí),根據(jù)分析后圖像 調(diào)節(jié) Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動(dòng)閾值線至高于陰性對(duì)照),重新分析結(jié)果。

5.2 結(jié)果判斷 陽(yáng)性:檢測(cè)通道 Ct 值≤35,且曲線有明顯的指數(shù)增長(zhǎng)曲線; 可疑:檢測(cè)通道 35<Ct 值≤38,建議重復(fù)檢測(cè),如果檢測(cè)通道仍為 3538 或無(wú) Ct 值。

6. 質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn) 陰性質(zhì)控品:Ct>38 或無(wú) Ct 值顯示; 陽(yáng)性質(zhì)控品:擴(kuò)增曲線有明顯指數(shù)生長(zhǎng)期,且 Ct 值≤32; 以上條件應(yīng)同時(shí)滿足,否則實(shí)驗(yàn)視為無(wú)效。

7. 檢測(cè)方法的局限性 1.樣本檢測(cè)結(jié)果與樣本收集、處理、運(yùn)送以及保存質(zhì)量有關(guān); 2.樣本提取過(guò)程中沒(méi)有控制好交叉污染,會(huì)出現(xiàn)假陽(yáng)性結(jié)果; 3.陽(yáng)性對(duì)照、擴(kuò)增產(chǎn)物泄漏,會(huì)導(dǎo)致假陽(yáng)性結(jié)果; 4.病原體在流行過(guò)程中基因突變、重組,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果; 5.不同的提取方法存在提取效率差異,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果; 6.試劑運(yùn)輸,保存不當(dāng)或試劑配制不準(zhǔn)確引起的試劑檢測(cè)效能下降,出現(xiàn)假陰性或定量檢測(cè)不準(zhǔn)確的結(jié)果; 7.本檢測(cè)結(jié)果僅供參考,如須確診請(qǐng)結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測(cè)手段。

【注意事項(xiàng)】 1.所有操作嚴(yán)格按照說(shuō)明書進(jìn)行; 2.試劑盒內(nèi)各種組分使用前應(yīng)自然融化,*混勻并短暫離心; 3.反應(yīng)液應(yīng)避光保存; 4.反應(yīng)中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊; 5.使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專用工作服; 6.樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進(jìn)行,以免交叉污染; 7.實(shí)驗(yàn)完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺(tái)和移液器; 8.試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對(duì)待,并按照《微生物生物醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室生物安全通則》進(jìn)行處理。

【參考文獻(xiàn)】 [1] Moennig V, Floegel-Niesmann G, Greiser-Wilke I. Clinical signs and epidemiology of classical swine fever: review of new knowledge [J]. Vet J, 2003, 165(1): 1-2. [2] Backer J A, Brouwer H, Schaik G, et al. Using mortality data for early detection of classical swine fever in the Netherlands [J]. Prev Vet Med, 2011, 99(1): 38-47. [3] 國(guó)家質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)檢疫總局. GB/T 27540-2011 鑒豬瘟病毒實(shí)時(shí)熒光 RT-PCR 檢測(cè)方法

 

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